Diagnostic du vivant de l'animal

MéthodeLa tuberculination (test in vivo)

Principe

Il s'agit de mettre en évidence une réponse allergique (HSR) chez un bovin sensibilisé par des mycobactéries MTCB.

Pour la détecter, une substance à base de protéines mycobactériennes purifiées est utilisée. Ce mélange protéique est appelé PPD (PPD-B lorsqu'il est issu de « M. bovis ») pour « « Purified proteine derivative » » (dérivé protéique purifié) : il s'agit d'un haptène, c'est-à-dire une substance dotée de la capacité à être reconnue spécifiquement par les LT d'un animal infecté, mais non immunogène, et qui n'est donc pas capable de sensibiliser immunologiquement un bovin.

Pour en savoir plus, cliquez sur ce lien.

Attention

Conséquence pratique : le test de tuberculination utilisé pour le dépistage de la tuberculose bovine fait appel à l'injection de PPD, qui permet de dépister un état d'HSR sans interférer avec le dépistage ultérieur de l'infection (cette injection peut être répétée chez un même animal après un délai d'au moins 6 semaines).

Méthode

Objectifs, avantages et inconvénients respectifs et indications de l'IDS et de l'IDC

Deux tests d'intradermotuberculination sont utilisables en France :

  • L'intradermotuberculination simple ou IDS : elle consiste à injecter de la PPD-B pour détecter un état d'HSR préexistant due à une infection par M. bovis ou par une autre espèce du complexe MTBC.

Attention

Attention ! Les vaches infectées par des mycobactéries atypiques (complexe MAC ou « M. avium-intracellulare ») peuvent aussi réagir à la PPD-B car les bactéries MTBC partagent des antigènes avec les MAC (qu'il s'agisse de mycobactéries de l'environnement, de souches de « M. avium » pathogènes pour les poules ou de « M. avium sbsp. paratuberculosis », l'agent de la paratuberculose des ruminants).

  • L'intradermotuberculination comparative ou IDC : elle consiste à injecter non seulement de la PPD-B, mais aussi de la PPD-A, une PPD issue de M. avium, en partant du principe que la réaction immunitaire homologue est plus forte que la réaction hétérologue. En d'autres termes, en cas d'IDC, une vache infectée par M. bovis sera supposée réagir davantage à la PPD-B qu'à la PPD-A et inversement pour une vache infectée par une bactérie MAC.

Le tableau suivant présente les caractéristiques des deux tests.

Caractéristiques respectives des tests IDS et IDC

IDS

IDC

PPD injectées

Injection de PPD-B

Injection de PPD-B et de PPD-A

Objectif

Mise en évidence d'une réponse allergique vis-à-vis des mycobactéries (MTBC et MAC)

Différenciation d'une réponse allergique vis-à-vis de de « M. bovis » « versus » celle vis-à-vis de mycobactéries atypiques

Avantage

- Sensibilité relativement bonne : 76 à 94 %

- Plus simple de réalisation que l'IDC (un seul point d'injection et de lecture)

Spécificité > IDS : 78,8 à 100 %

Inconvénient

Spécificité < IDC (réaction si infection par mycobactéries atypiques : 91,0 à 98 %

- Sensibilité < IDS : 50 %

- Plus contraignant techniquement (deux points d'injection et de lecture)

Indication traditionnelle pour le dépistage

Dépistage en 1ère intention

- Dépistage en 2ème intention (si résultat IDS non négatif)

- Dépistage en 1ère intention si mycobactéries atypiques dans les élevages

Indication actuelle (cf. infra)

Dépistage en 1ère intention en Corse

Dépistage en 1ère intention dans toute la France (sauf Corse et Camargue)

Méthode

Matériel

Les IDS et les IDC doivent être réalisées par un vétérinaire sanitaire selon un protocole strictement réglementé (cf. infra), et ce d'autant plus que la lecture n'est pas automatisable. Il en résulte que tous les facteurs permettant de réduire le niveau d'erreur, de biais ou d'incertitude au niveau de la réalisation technique et de la lecture ont été pris en compte, du moins en théorie.

Matériel de contention

Il doit être adapté en fonction de la race et du mode d'élevage : cornadis, couloir, cage de contention... et doit être disponible le jour prévu pour la tuberculination, sous la responsabilité de l'éleveur (avec l'aide éventuelle du Groupement de Défense Sanitaire (Figure 3.5).

Matériel de tuberculination

Le matériel dont doit disposer le vétérinaire sanitaire est le suivant :

  • Ciseaux ou tondeuse, à la fois pour pouvoir injecter dans le derme et pour mieux repérer le site de l'injection le jour de la lecture. Il faut proscrire le rasoir, qui peut irriter la peau.

  • Seringues homologuées pour injecter la/les PPD par voie strictement intradermique, à raison d'une seringue qui est strictement réservée à chaque PPD (avec un code couleur différent pour la PPD-B et pour la PPD-A). Ces seringues doivent être entretenues avec soin pour ne pas fausser le volume injecté. Actuellement, seules les seringues ci-dessous sont autorisées. Elles sont calibrées pour délivrer 0,1 ml de PPD.

  • Cutimètre à ressort homologué :

Il permet de lire de façon objective l'épaisseur du pli de peau avant injection de la/des PPD et lors de la lecture de la réaction tuberculinique. Les résultats sont exprimés en millimètres (mm). Aucune lecture subjective n'est autorisée réglementairement, que ce soit pour l'IDS ou pour l'IDC.

- La PPD bovine (PPD-B) PPD-B pour IDS et IDC et La PPD aviaire (PPD-A) pour IDC :

Elles sont injectées en intradermique sous un volume autorisé de 0,1 mL.

Méthode

Réalisation technique, résultats, interprétation

Les différentes étapes et les modalités de réalisation sont résumées ci-dessous. Les particularités de l'IDC par rapport à l'IDS sont mentionnées en rouge.

Sources : Photos n°,1, 2, 4, 5 et 6 : GDS64 ; Photo n°3 : GDS 18 ; Photo n° 7 : EnvA

Ci dessous une présentation alternative, sans doute plus lisible, avec des illustrations claires et homogènes.

Inconvénient : Cette alternative fait un peu doble emploi avec la vidéo qui est dessous

Tuberculination

Réaliser une intradermo-tuberculinationInformations[1]

ComplémentPour aller plus loin

  • La SNGTV propose un film sur la réalisation technique d'une IDC et sa lecture :

Intradermo-tuberculination comparativeInformations[2]

Méthode

Expression et interprétation des résultats

Interprétation des résultats d'une intradermotuberculination à l'échelle individuelle

IDS

IDC

Expression quantitative des résultats à l'échelle individuelle

Calcul de l'épaississement au point d'injection de la PPD-B : ΔB = différence entre l'épaisseur finale et l'épaisseur initiale (en mms)

ΔB  ≥ 4 mm POSITIF

ΔB ≤ 2 mm NÉGATIF

2 mm < DΔB < 4 mm DOUTEUX

1/ Calcul de l'épaississement au point d'injection de chacune des PPD, PPD-B et de PPD-A / ΔB et ΔA respectivement,

2/ Puis calcul de la différence d'épaississement entre la réaction aux 2 PPD : ΔB – ΔA

Si DB ≤ 2mm : → NEGATIF (quel que soit le résultat de ΔB – ΔA)

Si DB > 2 mm :

- ΔB – DA > 4 mm → POSITIF

- ΔB – DA < 1 mm → NÉGATIF

- ΔB – DA [1 – 4 mm] → DOUTEUX

Interprétation à l'échelle du troupeau

Un résultat non négatif à l'IDS élevage suspect

Interprétation réalisée à l'échelle du troupeau, à l'aide d'un graphique

Voir le document Interprétation des résultats du test IDC [pdf]

Se reporter à la figure suivante

Des exemples de résultats et d'interprétation à l'aide de ce graphique figurent ci-après :

A noter que chaque animal du troupeau qui a été testé par IDC est représenté en abscisse par sa ΔB et en ordonnée par sa ΔA. C'est la répartition des réactions des animaux sur le graphique qui est divisée en 3 zones définies par les 2 droites (ΔB – DA > 4 et ΔB – DA < 1 mm.

Interprétation des résultats d'une intradermotuberculination à l'échelle du troupeau

Données du graphique

Résultats

Négatif

Douteux

Positif

Interprétation

Réaction due à des MAC

Infection par des MAC probable mais ne pouvant être infirmée à ce stade

Infection par une MTBC probable mais ne pouvant être affirmée à ce stade

MéthodeLe dosage de l'interféron-γ (test in vitro)

Principe

Le test de dosage de l'interféron-γ (test INFγ) est un test « in vitro » alternatif à la tuberculination, qui est basé sur la détection de la réponse immunitaire à médiation cellulaire, tout au moins d'un de ses effecteurs, l'interféron-γ , lorsque ces lymphocytes T sont mis en présence de haptènes/antigènes de MTBC (cf. 1ère partie et figure sur les Étapes de réalisation du test de dosage de l'interféron-γ).

Méthode

Avantages et inconvénients du dosage de l'interféron-γ par rapport à l'intradermo-tuberculination (IDT)

Ils sont résumés dans ce tableau :

Avantages et inconvénients du test de dose de l'interféron-γ par rapport à l'IDT

Avantages

- 1 seul déplacement

- Aucun délai entre tests ou après test IDT

- Lecture objective (test ELISA)

- Réponse légèrement plus précoce qu'à l'IDT

- Sensibilité : ≈ IDS et > IDC

- Spécificité : > IDS et ≈ IDC

Inconvénients

- Coût unitaire = 50-60 € (IDS = 3-3,50 € et IDC = 7,50-10 €, mais y ajouter le coût du 2ème déplacement du vétérinaire)

- Délai acheminement du sang au laboratoire < 8h avec maintien à 20°C

Méthode

Mise en œuvre

Cliquez sur les images pour les zoomer

Étapes de réalisation du test de dosage de l'interféron-γ

Etape 1 Prélèvement en élevage

Étape 1. Prélèvement en élevage

Le prélèvement de sang sur tube hépariné permet la récupération de lymphocytes T (LT) qui vont être stimulés au laboratoire

Etape 2 Acheminement au laboratoire agréé

Étape 2. Acheminement au laboratoire agréé

T° = température

La conservation à température ambiante et l'acheminement rapide au laboratoire sont tous deux nécessaires pour préserver la viabilité des LT mémoires (LTm) qui seront stimulés pour produire des IFNγ en cas de sensibilisation préalable par des mycobactéries

Étape 3.1 Stimulation des lymphocytes T mémoires (si présents)

Étape 3a. Stimulation des lymphocytes T mémoires (si présents)

Étape 3.2 Stimulation des lymphocytes T mémoires (si présents)

Étape 3b. Stimulation des lymphocytes T mémoires (si présents)

Cliquez sur les images pour les zoomer

Étape 1 Prélèvement en élevage

Étape 1. Prélèvement en élevage

Le prélèvement de sang sur tube hépariné permet la récupération de lymphocytes T (LT) qui vont être stimulés au laboratoire

Étape 2 Acheminement au laboratoire agréé

Étape 2. Acheminement au laboratoire agréé

T° = température

La conservation à température ambiante et l'acheminement rapide au laboratoire sont tous deux nécessaires pour préserver la viabilité des LT mémoires (LTm) qui seront stimulés pour produire des IFNy en cas de sensibilisation préalable par des mycobactéries

Étape 3.1 Stimulation des lymphocytes T mémoires (si présents)

Étape 3a. Stimulation des lymphocytes T mémoires (si présents)

Étape 3.2 Stimulation des lymphocytes T mémoires (si présents)

Étape 3b. Stimulation des lymphocytes T mémoires (si présents)